بررسی اثرات پنتوکسی فیلین بر تغییرات استریولوژی بافت تخمدان منجمد شده موش سوری

زمینه و هدف: انجماد تخمدان یک تکنیک در روش های کمک باروری مصنوعی می باشد، درحالی که تخمدان نسبت به پروسه انجماد ذوب آسیب‌پذیراست. پنتوکسی فیلین به عنوان یک آنتی اکسیدان با کاهش رادیکال آزاد در محیط کشت اثر محافظتی دارد. هدف از این مطالعه تعیین و بررسی اثرات پنتوکسی فیلین بر تغییرات استریولوژی بافت تخمدان منجمد شده موش سوری بود. روش بررسی: این مطالعه تجربی در سال 1398 در دانشگاه علوم پزشکی شیراز بر روی 25 تخمدان موش ماده انجام شد، که به طور تصادفی به پنج گروه(هر گروه 5 موش) تقسیم شدند؛ گروه1(کنترل): در این گروه هیچ‌گونه درمانی صورت نگرفت. گروه های 3 و2 (شاهد2و1): در گروه 2 پس از خارج شدن تخمدان‌ها، نیم ساعت در انکوباتورco2 در محیط بافر فسفات سالین+آلبومین سرم گاوی(pb1+bsa) قرار داده و در گروه 3 علاوه بر قرار دادن در انکوباتور، 1.8 میلی‌مولار پنتوکسی فیلین به محیط بافر اضافه گردید و گروه های 4 و 5(آزمایش 2و1): در گروه 4 پس از خارج شدن تخمدان‌ها از بدن حیوان، تخمدان‌ها به مدت دو هفته منجمد شده و پس از طی این زمان ذوب و در انکوباتور co2 دار به مدت نیم ساعت در محیط بافر فسفات سالین+ آلبومین سرم گاوی (pb1+bsa) قرار داده و در گروه 5 علاوه بر فریز، ذوب و انکوبه کردن، تخمدان ها در معرض بافر حاوی 1.8 میلی مولار پنتوکسی فیلین قرار گرفتند. پس از مراحل تهیه بافتی، مقاطع بافت تخمدان مورد ارزیابی استریولوژیک قرار گرفت. داده‌ها با استفاده از نرم‌افزار spss و آزمون‌ آماری کروسکال والیس تجزیه و تحلیل شدند. یافته ها: برآوردهای استریولوژی نشان داد که حجم کل تخمدان و کورتکس در گروه های شاهد 2، آزمایش 1 و آزمایش 2 نسبت به گروه کنترل افزایش یافت، اما این افزایش معنی‌دار نبود(0.05

Evaluation of the Effects of Pentoxifylline on Stereological Changes in Frozen Ovarian Tissue of Mice

Background aim: Ovarian cryopreservation is a technique in artificial insemination methods, while the ovary is vulnerable to the cryopreservation process. Pentoxifylline as an antioxidant takes a protective effect by reducing free radicals in culture medium. The aim of the present study was to determine and evaluate the antioxidant effects of pentoxifylline on stereological changes in frozen ovarian tissue of mice after freezing. Methods: The present experimental study was conducted on 25 female ovaries at Shiraz University of Medical Sciences in 2019, which were randomly divided into five groups of five. Group 1 (control): No treatment was performed in this group. Groups 2 and 3 (sham 1,2): In Group 2, after the ovaries were removed, they were placed for half an hour in a CO2 incubator in the saline phosphate buffer + bovine serum albumin (PB1 + BSA) environment, And in Group 3, in addition to being placed in the incubator, 1.8 mM of Pentoxifylline was added to the buffer environment. Groups 4 and 5 (Experimental 1, 2): In Group 4, after the ovaries were removed from the animalchr('39')s body, the ovaries were vitrified for two weeks, after which time they were melted and placed in a CO2 incubator for half an hour in the saline phosphate buffer + bovine serum albumin (PB1 + BSA) environment, and In Group 5, in addition to vitrified, melting, and incubation, the ovaries were exposed to buffers containing 1.8 mM pentoxifylline. After tissue processing, ovarian tissue sections were studied with stereological methods. Data were analyzed using SPSS software and KruskalWallis statistical test. Results: The stereological estimation indicated that the total volume of ovaries and cortex increased in control groups 2, experiment 1 and experiment 2 compared to the control group, but no significant increase was perceived (p<0.05). On the other hand, the volume of medulla in control groups 2, experiment 1 and experiment 2 decreased compared to the control group, but this decrease was not significant (p<0.05). Conclusions: According to the results of the present study, pentoxifylline and cryopreservation increased the volume of ovarian tissue, but despite the antioxidant properties of pentoxifylline, no effect was observed on protecting the ovary from the negative effects of cryopreservation.