بررسی اثر گلیفوسیت بر بافت‌شناسی تخمدان و میزان بلوغ تخمک در شرایط آزمایشگاهی در موش‌های تحریک تخمک‌گذاری شده

مقدمه: گلیفوسیت، یکی از معروف‌ترین علف‌کش‌هایی است که استفاده از آن به دلیل استفاده زیاد از گیاهان زارعی مقاوم به گلیفوسیت رو به ‌افزایش است. این ماده اثرات مخربی مانند اثرات سمی بر بافت عصبی، سلول‌ها و دستگاه تولیدمثل از خود نشان می‌دهد. هدف از این مطالعه، بررسی اثرات سمی این ماده بر بافت تخمدان موش‌ها و لقاح آزمایشگاهی تخمک‌ها به دنبال تحریک تخمک‌گذاری بود. روش کار: در این مطالعه، 32 موش ماده nmri، به صورت تصادفی به گروههای زیر تقسیم شدند: شاهد، گلیفوسیت، تحریک تخمک‌گذاری، تحریک تخمک‌گذاری-گلیفوسیت. گلیفوسیت (0/5 درصد) از طریق اضافه شدن به آب آشامیدنی به مدت سه هفته به حیوانات داده شد. جهت تحریک تخمک‌گذاری حیوانات از هورمون های hmg و hcg استفاده شد. تخمک‌ها از ناحیه آمپول جمع‌آوری شدند و بعد از بررسی کمیت و کیفیت آنها، بلوغ آزمایشگاهی انجام شد. در پایان این مطالعه، هیستوپاتولوژی تخمدان مورد بررسی قرار گرفت. یافته‌ها: نتایج ما نشان داد که تعداد فولیکول‌های ثانویه و گراف در گروه گلیفوسیت به‌صورت معنی‌داری کمتر از گروه شاهد بود درحالی‌که تعداد فولیکول‌های آترتیک افزایش یافت (0/05 > p). تعداد تخمک‌ها در مرحله شکست ژرمینال وزیکول و متافاز 2 در گروه تحریک تخمک‌گذاری- گلیفوسیت در مقایسه با گروه تحریک تخمک‌گذاری کاهش یافت. بعد از بلوغ آزمایشگاهی هم تعداد تخمک‌ها در مرحله شکست ژرمینال وزیکول و متافاز 2 در گروه تحریک تخمک‌گذاری-گلیفوسیت در مقایسه با گروه تحریک تخمک‌گذاری کاهش یافت. نتیجه‌گیری: گلیفوسیت منجر به اثرات مخرب بر بافت تخمدان می‌شود. همچنین گلیفوسیت باعث نقص در اووژنز و لقاح آزمایشگاهی می‌شود.

the effect of glyphosate on ovarian tissue and in vitro maturation in superovulated mice

introduction: glyphosate is the most popular broad-spectrum herbicide globally due to the growing demand for glyphosate-resistant crops. glyphosate exhibits harmful properties, including cytotoxicity, neurotoxicity, and reproductive toxicity. this study aimed to investigate the detrimental effects of glyphosate on ovarian histopathology in mice and the in vitro maturation (ivm) of oocytes following superovulation.methods: in this study, thirty-two female nmri mice were randomly divided into the following groups: control, glyphosate, superovulation, and superovulation-glyphosate. animals received glyphosate (0.5%) continuously through drinking water for three weeks. hmg and hcg were used to induce superovulation. oocytes were collected from the ampulla, and the quantity and quality of oocytes were analyzed. then, in vitro maturation (ivm) of oocytes was performed. at the end of the study, ovarian histopathology was analyzed.results: compared to the control group, the glyphosate-treated group exhibited a significant decrease in secondary and graafian follicles while demonstrating a concomitant increase in atretic follicles (p < 0.05). additionally, the superovulation-glyphosate group showed fewer germinal vesicle breakdown (gvbd) and mii oocytes than the superovulation group. in the superovulation-glyphosate group, there was a notable reduction in gvbd and mii oocytes following in vitro maturation (ivm).conclusions: glyphosate has the potential to damage ovarian tissue and adversely affect ivm and oogenesis.