|
|
بررسی مقایسه ای هیستومورفومتری بافت روده باریک با سه روش کلارک-بسته، فرمالین-باز و فرمالین-بسته در جوجههای گوشتی
|
|
|
|
|
نویسنده
|
محمودتبار عارف ,کریمی ترشیزی محمد امیر
|
منبع
|
آسيب شناسي درمانگاهي دامپزشكي - 1397 - دوره : 12 - شماره : 4 - صفحه:357 -368
|
چکیده
|
پایدار نمودن بافت یک مرحله بسیار حیاتی در آمادهسازی بافت جهت مطالعات بافت شناسی بهشمار میرود و هرگونه اشتباه در این مرحله غیرقابل جبران خواهد بود. هدف از این مطالعه مقایسه تاثیر سه روش تهیه مقاطع بافتی کلارک-بسته، فرمالین-باز و فرمالین-بسته بر هیستومورفومتری مخاط روده باریک در جوجه های گوشتی بود. در این بررسی 30 قطعه جوجه گوشتی سویه راس 308 نر در سن 10 روزگی مورد استفاده قرار گرفت. نمونههای روده باریک بعد از شستشو، بلافاصله با محلول سالین فرمالین 10 درصد بهشکل بسته و یا بازشده و محلول کلارک بهصورت دوطرف بسته پایدار شدند. پس از پایداری طبق روش استاندارد بافتشناسی، مقاطع میکروسکوپی به ضخامت 5 میکرومتر تهیه و با ائوزین-هماتوکسیلین و آلسینبلو رنگآمیزی شدند. در هر مقطع ارتفاع پرز، ضخامت پرز، عمق کریپت و تعداد سلولهای جامی با خطکش چشمی اندازهگیری و شاخص سطح پرز نیز محاسبه گردید. دادهها در قالب طرح کاملاً تصادفی با آزمون دانکن مورد مقایسه قرار گرفتند. نتایج نشان داد که روش تهیه و پایداری نمونههای روده باریک بر شاخصهای کمی بافتشناسی تاثیر معنیداری داشت (0.01>p). روش فرمالین-بسته بلندترین ارتفاع پرز و بیشترین عمق کریپت و روش کلارک-بسته، کمترین مقادیر را نشان دادند (0.01>p). همچنین روش کلارک-بسته و روشهای فرمالین-بسته و باز به ترتیب بیشترین ضخامت پرز را در هر سه قسمت روده کوچک نشان دادند (0.01>p) و بیشترین مقدار برای سطح پرز نیز در روش فرمالین-بسته مشاهده شد (0.01>p). با توجه به سادگی روش کار، قیمت مناسب، حفظ بهتر مخاط روده و عدم ایجاد تغییرات شدید در بافت، روش فرمالین-بسته بهعنوان روش برگزیده معرفی میشود.
|
کلیدواژه
|
پایدارسازی بافت، روده باریک، فرمالین، محلول کلارک، هیستومرفومتری
|
آدرس
|
دانشگاه تربیت مدرس, دانشکده کشاورزی, ایران, دانشگاه تربیت مدرس, دانشکده کشاورزی, گروه پرورش و مدیریت طیور, ایران
|
پست الکترونیکی
|
karimitm@modares.ac.ir
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Comparative histomorphometric study of small intestine in broiler chicken using the closedClarke, openedformalin and closedformalin fixation methods
|
|
|
Authors
|
Mahmoodtabar Aref ,karimi Torshizi Mohammad Amir
|
Abstract
|
Tissue fixation is a vital step in preparation of samples for histological studies and mistakes at this stage could lead to irreversible damage. The aim of this study was to compare the effect of three sample preparationfixation methods on histomorphometic indices of small intestine of broilers. Thirty 10 day old broilers of Ross 308 strain were used in the study. Segments of small intestine were washed and prepared as opened or closed sections. The closed sections were fixed in 10% salineformalin. The opened samples were cut at the mesenteric line and were fixed by 10% salineformalin. In Clarke’s fixation the ends of samples were sealed by string and Clarke’s solution was injected into the lumen. Fixed samples were subjected to paraffin embedding and 5 µm sections were cut using rotary microtome and sections were stained by EosinHematoxylin and Alcian blue. In each section the villus height, villus thickness, crypt depth and goblets’ density were measured under light microscope and the villus surface index was also calculated. Data were subjected to ANOVA in a completely randomized design with three treatments and 30 observations. The results indicated that method of preparationfixation had a significant effect on morphometric indices (p<0.01). The closedformalin’s samples had the greatest villus height and crypt depth values in all three intestinal segments, while the lowest values were observed in closedClarke’s method (p<0.01). ClosedClarke’s samples had the thickest villus in all three parts of small intestine followed by closedformalin’s and openedformalin’s samples (p<0.01). Villus surface area was highest in closedformalin fixed samples (p<0.01). Considering simplicity of the method, low cost, better mucosal protection and lack of severe tissue changes observed in closedformalin’s method, this method was considered as a method of choice in histomorphometric studies of poultry small intestinal mucosa.
|
Keywords
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|