شناسایی برخی سویه‌های باکتریایی تشکیل دهنده‌ی بیوفیلم جداسازی شده از منطقه مانگرو

پیشینه و اهداف: انسان از دیرباز با مسائل مربوط به پدیده ی چسبندگی زیستی (بیوفولینگ) درگیر بوده است. جوامع فولینگ زیستی دارای اثرات مختلف اکولوژیک، اقتصادی و سلامت (انسان، گیاهان و جانوران دریایی) می‌باشند. عموماً تشکیل بیوفیلم باکتریایی‌، اولین مرحله ی ایجاد فرایند فولینگ دریایی شناخته شده است. هدف از این مطالعه، شناسایی باکتری‌هایی با توانایی بیش‌ترین میزان تشکیل بیوفیلم در محدوده جنگل حرا می‌باشد. روش‌ها: در این راستا پس از نمونه‌برداری از لایه بیوفیلم یک روزه تشکیل شده بروی پنل چوبی، جداسازی و خالص‌سازی جدایه‌ها در محیط کشت مرین زوبل انجام شد. با سنجش میزان تشکیل بیوفیلم باکتریایی با استفاده از روش کریستال ویوله از مجموع 12 جدایه، 9 جدایه با میزان قدرت تشکیل بیوفیلم قوی و متوسط جهت شناسایی مولکولی انتخاب شدند. استخراج dna به روش ctab و شناسایی مولکولی با استفاده از تکثیر ژن s rrna16 صورت گرفت.یافته‌ها: در این میان 58.3% جدایه‌ها تشکیل بیوفیلم قوی و 16.6% جدایه‌ها تشکیل بیوفیلم متوسط و 25 % جدایه‌ها تشکیل بیوفیلم ضعیف را نشان دادند. بر اساس نتایج شاخه‌ی proteobacteria با 55.5% شاخه‌ی غالب (4 جنس alteromonas، salinimonas، vibrio و pseudoalteromonas) و پس از آنfirmicutes  با 33.3% (3 جنس bacillus، oceanobacillus و fictibacillus) وbacteroidetes  با 11.11% (جنس tenacibaculum) تشخیص داده شد.نتیجه‌گیری: بیوفیلم‌های دریایی تشکیل ‌شده بروی سطوح غوطه‌ور بی‌جان و جاندار، ضمن دارا بودن نقش کلیدی در استقرار لارو بارناکل‌ها و سایر ماکروفولرها، منبع امیدوارکننده‌ای برای رویکردهای ضدفولینگ ایمن و دوستدار محیط زیست و آبزیان می‌باشند.

identification of some bacterial strains isolated from mangrove habitat exhibiting abilities of biofilm-forming

background and objective: biofouling has long been a problem for humans. bio-fouling communities have different ecological, economic and health effects (humans, plants and marine animals). generally, bacterial biofilm formation is the first step of the marine fulling process. this study aimed to identify bacteria capable of forming the strongest biofilms in mangroves. methods: in this regard, after sampling a one-day biofilm layer formed on a wooden panel, the isolates were isolated and purified using the marin zobel culture medium. from 12 isolates, we selected 9 isolates for molecular identification based on their ability to form bacterial biofilms using the violet crystal method. dna was extracted using ctab method and molecular identification was performed using 16s rrna gene amplification. findings: among isolates, 58.3% showed strong biofilm formation,16.6% showed moderate biofilm formation, and 25% showed weak biofilm formation. based on the results, proteobacteria with 55.5% as dominant phylum (4 genera alteromonas, salinimonas, vibrio and pseudoalteromonas), firmicutes with 33.3% (3 genera bacillus, oceanobacillus and fictibacillus), and bacteroidetes 11/11% (genus tenacibaculum) was identified. conclusion: marine biofilms formed on inanimate and living submerged surfaces playing a key role in the establishment of larvae of barnacles and other macrofoulers are a promising source for safe and environmentally friendly aquatic anti-fouling approaches.